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石蠟切片基本技術(shù)
更新時(shí)間:2022-03-28   點(diǎn)擊次數(shù):858次
   石蠟切片(paraffin section) 組織學(xué)常規(guī)制片技術(shù)中最為廣泛應(yīng)用的方法。石蠟切片不僅用于觀察正常細(xì)胞組織的形態(tài)結(jié)構(gòu),也是病理學(xué)和法醫(yī)學(xué)等學(xué)科用以研究、觀察及判斷細(xì)胞組織的形態(tài)變化的主要方法,而且也已相當(dāng)廣泛地用于其他許多學(xué)科領(lǐng)域的研究中。教學(xué)中,光鏡下觀察切片標(biāo)本多數(shù)是石蠟切片法制備的。活的細(xì)胞或組織多為無(wú)色透明,各種組織間和細(xì)胞內(nèi)各種結(jié)構(gòu)之間均缺乏反差,在一般光鏡下不易清楚區(qū)別出;組織離開機(jī)體后很快就會(huì)死亡和產(chǎn)生組織fu敗,失去原有正常結(jié)構(gòu),因此,組織要經(jīng)固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細(xì)胞組織死亡,而能清晰辨認(rèn)其形態(tài)結(jié)構(gòu)。
  基本技術(shù)
  石蠟切片法包括取材、固定、洗滌和脫水、透明、浸蠟、包埋、切片與貼片、脫蠟、染色、脫水、透明、封片等步驟。一般的組織從取材固定到封片制成玻片標(biāo)本需要數(shù)日,但標(biāo)本可以長(zhǎng)期保存使用,為永f久性顯微玻片標(biāo)本。
  取材
  應(yīng)根據(jù)要求選取材料來(lái)源及部位。例如植物細(xì)胞有絲分裂多選取洋蔥根尖,細(xì)胞分裂快又便于切取;豬的肝小葉邊界清晰明確;耳蝸以豚鼠的內(nèi)耳易于定位和剝離。材料必須新鮮,擱置時(shí)間過(guò)久則產(chǎn)生蛋白質(zhì)分解變性,導(dǎo)致細(xì)胞自溶及細(xì)菌的滋生,而不能反映組織活體時(shí)的形態(tài)結(jié)構(gòu)。
  固定
  用適當(dāng)?shù)幕瘜W(xué)藥液——固定液浸漬切成小塊的新鮮材料,迅速凝固或沉淀細(xì)胞和組織中的物質(zhì)成分、終止細(xì)胞的一切代謝過(guò)程、防止細(xì)胞自溶或組織變化,盡可能保持其活體時(shí)的結(jié)構(gòu)。固定能使組織硬化,有利于切片的進(jìn)行,而且也有媒浸作用,有利于組織著色。固定液的種類很多,其對(duì)組織的硬化收縮程度以及組織內(nèi)蛋白質(zhì)、脂肪、糖類等物質(zhì)的作用各不相同。例如純酒精可固定肝糖而能溶解脂肪,甲醛能固定一般組織,但溶解肝糖和色素。固定液可分為單一固定液及混合固定液。前者有甲醛(乙醛、福爾馬林)、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、鋨酸(四氧化鋨)、重鉻酸鉀及苦味酸等,單一固定液不能固定細(xì)胞中的所有成分;混合固定液可以互補(bǔ)不足,常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液(配方見有關(guān)技術(shù)書籍)。因此,應(yīng)根據(jù)所要顯示的內(nèi)容來(lái)選擇適宜的固定液。10%福爾馬林(4%甲醛)或10%磷酸緩沖福爾馬林是病理切片常規(guī)使用的固定液,不僅適用于常規(guī)蘇木精-伊紅(HE)染色,還可以用于組織學(xué)有關(guān)的其他技術(shù)的切片染色。固定液的用量通常為材料塊的20倍左右,固定時(shí)間則根據(jù)材料塊的大小及松密程度以及固定液的穿透速度而定,可以從1小時(shí)至數(shù)天,通常為1小時(shí)至24小時(shí)。
  洗滌與脫水
  固定后的組織材料需除去留在組織內(nèi)的固定液及其結(jié)晶沉淀,否則會(huì)影響后期的染色效果。該步驟稱作洗滌多數(shù)用流水沖洗;使用含有苦味酸的固定液固定的則需用酒精多次浸洗;使用酒精或酒精混合液固定的組織,則不必洗滌,可直接進(jìn)行脫水。固定后或洗滌后的組織內(nèi)充滿水分,若不除去水分則無(wú)法進(jìn)行以后的透明、浸蠟與包埋處理,原因在于透明劑多數(shù)是苯類,苯類和石蠟均不能與水相溶合,水分不能脫盡,苯類無(wú)法浸入。酒精為常用脫水劑,它既能與水相混合,又能與透明劑相混。為了減少組織材料的急劇收縮,應(yīng)使用從低濃度到高濃度遞增的順序進(jìn)行,通常從30%或50%酒精開始,經(jīng)70%、85%、95%直至純酒精(無(wú)水乙醇),每次時(shí)間為1~數(shù)小時(shí),如不能及時(shí)進(jìn)行各級(jí)脫水,材料可以放在70%酒精中保存,因高濃度酒精易使組織收縮硬化,不宜處理過(guò)久。正丁醇、叔丁醇、丙酮及二氧陸環(huán)等也可做脫水劑。
  透明
  純酒精不能與石蠟相溶,還需用能與酒精和石蠟相溶的媒浸液,替換出組織內(nèi)的酒精。材料塊在這類媒浸液中浸漬,出現(xiàn)透明狀態(tài),此液即稱透明劑,透明劑浸漬過(guò)程稱透明。常用的透明劑有二甲苯、苯、氯仿、正丁醇等,各種透明劑均是石蠟的溶劑。通常組織先經(jīng)純酒精和透明劑各半的混合液浸漬1~2小時(shí),再轉(zhuǎn)入純透明劑中浸漬。透明劑的浸漬時(shí)間則要根據(jù)組織材料塊大小及屬于囊腔抑或?qū)嵸|(zhì)器官而定。如果透明時(shí)間過(guò)短,則透明不*,石蠟難于浸入組織;透明時(shí)間過(guò)長(zhǎng),則組織硬化變脆,就不易切出完整切片,最長(zhǎng)為數(shù)小時(shí)。
  浸蠟與包埋
  用石蠟取代透明劑,使石蠟浸入組織而起支持作用。通常先把組織材料塊放在熔化的石蠟和二甲苯的等量混合液浸漬1~2小時(shí),再先后移入2個(gè)熔化的石蠟液中浸漬3小時(shí)左右,浸蠟應(yīng)在高于石蠟熔點(diǎn)3℃左右的溫箱中進(jìn)行,以利石蠟浸入組織內(nèi)。浸蠟后的組織材料塊放在裝有蠟液的容器中(擺好在蠟中的位置),待蠟液表層凝固即迅速放入冷水中冷卻,即做成含有組織塊的蠟塊。容器可用光亮且厚的紙折疊成紙盒或金屬包埋框盒。如果包埋的組織塊數(shù)量多,應(yīng)進(jìn)行編號(hào),以免差錯(cuò)。石蠟熔化后應(yīng)在蠟箱內(nèi)過(guò)濾后使用,以免因含雜質(zhì)而影響切片質(zhì)量,且可能損傷切片刀。通常石蠟采用熔點(diǎn)為56~58℃或60~62℃兩種,可根據(jù)季節(jié)及操作環(huán)境溫度來(lái)選用。
  切片
  包埋好的蠟塊用刀片修成規(guī)整的四棱臺(tái),以少許熱蠟液將其底部迅速貼附于小木塊上,夾在輪轉(zhuǎn)式切片機(jī)的蠟塊鉗內(nèi),使蠟塊切面與切片刀刃平行,旋緊。切片刀的銳利與否、蠟塊硬度是否適當(dāng)都直接影響切片質(zhì)量,可用熱水或冷水等方法適當(dāng)改變蠟塊硬度。通常切片厚度為4~7微米,切出一片接一片的蠟帶,用毛筆輕托輕放在紙上。
  貼片與烤片
  用粘附劑將展平的蠟片牢附于載玻片上,以免在以后的脫蠟、水化及染色等步驟中二者滑脫開。粘附劑是蛋白甘油。首先在潔凈的載玻片上涂抹薄層蛋白甘油,再將一定長(zhǎng)度蠟帶(連續(xù)切片)或用刀片斷開成單個(gè)蠟片于溫水(45℃左右)中展平后,撈至玻片上鋪正,或直接滴兩滴蒸餾水于載玻片上,再把蠟片放于水滴上,略加溫使蠟片鋪展,最后用濾紙吸除多余水分,將載玻片放入45℃溫箱中干燥,也可在37℃溫箱中干燥,但需適當(dāng)延長(zhǎng)時(shí)間。
  切片脫蠟及水化
  干燥后的切片需脫蠟及水化才能在水溶性染液中進(jìn)行染色。用二甲苯脫蠟,再逐級(jí)經(jīng)純酒精及梯度酒精直至蒸餾水。如果染料配制于酒精中,則將切片移至與酒精近似濃度時(shí),即可染色。
  染色
  染色的目的是使細(xì)胞組織內(nèi)的不同結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)不同的顏色以便于觀察。未經(jīng)染色的細(xì)胞組織其折光率相似,不易辨認(rèn)。經(jīng)染色可顯示細(xì)胞內(nèi)不同的細(xì)胞器及內(nèi)含物以及不同類型的細(xì)胞組織。染色劑種類繁多,應(yīng)根據(jù)觀察要求及研究?jī)?nèi)容采用不同的染色劑及染色方法,還要注意選用適宜的固定劑才能取得滿意的結(jié)果。經(jīng)典的蘇木精(Hematoxylin)和伊紅(曙紅,Eosin)染色法是組織學(xué)標(biāo)本及病理切片標(biāo)本的常規(guī)染色,簡(jiǎn)稱HE染色。經(jīng)HE染色后,細(xì)胞核被蘇木精染成紫藍(lán)色,多數(shù)細(xì)胞質(zhì)及非細(xì)胞成分被伊紅染成粉紅色。由于蘇木精是帶陽(yáng)離子的染料,染液呈堿性,核內(nèi)染色質(zhì)及胞質(zhì)內(nèi)核糖體等物質(zhì)對(duì)這種染料有親和性,稱嗜堿性;而帶陰離子的染料伊紅配制的染液呈酸性,對(duì)這種染料的親和性,稱嗜酸性。有時(shí)不同的組織結(jié)構(gòu)還需要用特殊的染料及染色方法加以顯示,稱特殊染色。有些細(xì)胞組織經(jīng)硝酸銀浸潤(rùn)后,可使溶液中銀離子還原成金屬銀或銀粒附著在細(xì)胞組織上,呈棕黑色,這種性質(zhì)稱親銀性,而有些細(xì)胞組織本身不能使硝酸銀的銀離子還原成金屬銀,還需加還原劑才能將銀離子還原,稱嗜銀性。
  切片脫水、透明和封片
  染色后的切片尚不能在顯微鏡下觀察,需經(jīng)梯度酒精脫水,在95%及純酒精中的時(shí)間可適當(dāng)加長(zhǎng)以保證脫水*;如染液為酒精配制,則應(yīng)縮短在酒精中的時(shí)間,以免脫色。二甲苯透明后,迅速擦去材料周圍多余液體,滴加適量(1~2滴)中性樹膠,再將潔凈蓋玻片傾斜放下,以免出現(xiàn)氣泡,封片后即制成永久性玻片標(biāo)本,在光鏡下可長(zhǎng)期反復(fù)觀察。注意有些染料需特定廠家生產(chǎn)的產(chǎn)品。根據(jù)各種染色方法、組織類別及切片厚度,掌握適宜的染色時(shí)間,才能達(dá)到較好的染色效果。
  石蠟制片程序及環(huán)節(jié)繁多,需數(shù)日才能完成1個(gè)周期,但切片可長(zhǎng)期保存,供教學(xué)、科研及病理診斷及復(fù)察,并可利用蠟塊作其他項(xiàng)目的回顧性研究。病理常規(guī)制片過(guò)程中已簡(jiǎn)化了一些細(xì)的環(huán)節(jié)或縮短了部分處理時(shí)間以適應(yīng)臨床需要(可縮短至2天)。雖然冰凍切片大大快于石蠟切片,但所顯示的形態(tài)結(jié)構(gòu)卻不如后者,因此病理醫(yī)生最后還需要根據(jù)石蠟切片作出準(zhǔn)確診斷。近些年來(lái),在病理常規(guī)制片過(guò)程中采用了微波技術(shù),從而大大縮短了制片過(guò)程,而且對(duì)形態(tài)結(jié)構(gòu)并沒有影響。微波是一種波長(zhǎng)很短、頻率卻很高的高頻電磁波[波長(zhǎng)為1米 ~1毫米,頻率為300兆赫(MHz)~300千兆赫(GHz)]。組織經(jīng)微波輻射后加速組織內(nèi)部分子的高速運(yùn)動(dòng),以使液體的運(yùn)輸加快,增加彌散、滲透和交換效率,從而加速組織的固定、脫水、透明、包埋和染色各個(gè)環(huán)節(jié)。例如常規(guī)福爾馬林固定需數(shù)小時(shí)~1天,而且能引起組織收縮及某些抗原成分不同程度的受到破壞,微波固定僅需1~2分鐘,且可減少抗原的丟失和損害。選擇適當(dāng)?shù)臋n次(功率)、輻射時(shí)間和溫度是極為重要的。目前微波技術(shù)的應(yīng)用在國(guó)內(nèi)尚處于起步階段,許多技術(shù)應(yīng)用環(huán)節(jié)尚需進(jìn)一步摸索。
  石蠟切片與其他技術(shù)方法的結(jié)合
  石蠟切片不僅是經(jīng)典的方法,又是最基本的方法,它與其他新的技術(shù)方法相結(jié)合,使傳統(tǒng)的老技術(shù)擴(kuò)大了應(yīng)用范圍,開辟了許多新領(lǐng)域,增加了許多新的研究、觀察內(nèi)容。隨新的儀器及新的研究技術(shù)的不斷問(wèn)世及使用,使組織學(xué)的觀察研究從簡(jiǎn)單的形態(tài)結(jié)構(gòu)深入到各種成分的定性觀察,又從定性轉(zhuǎn)向定量計(jì)測(cè),使細(xì)胞組織的形態(tài),功能及代謝三結(jié)合,從而達(dá)到定性可靠、定位準(zhǔn)確及定量可測(cè)。
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